АВТОРЫ

НАУЧНЫЕ РАБОТЫ/

Лактоферрин как модулятор иммунного и воспалительного процессов.

D. Legrand, E. Elass, M. Carpentier and J. Mazurier

Тезисы. Лактоферрин – железосвязывающий гликопротеин семейства трансферринов. Высокая экспрессия и секреция лактоферрина в молоко и, особенно, в слизистую пищеварительного тракта определяется тем, что этот белок отвечает за первичную защиту организма. Лактоферрин также является компонентом вторичных гранул нейтрофилов и секретируется непосредственно в очаг инфекции при развитии воспалительного процесса. Дополнительно к антибактериальным свойствам лактоферрина установлена способность этого белка регулировать иммунный ответ организма и защищать его от процессов сепсиса, что было показано в многочисленных исследованиях in vitro и in vivo. Клеточные и молекулярные механизмы действия лактоферрина при модуляции воспаления активно изучаются, а некоторые уже полностью расшифрованы. На клеточном уровне лактоферрин активно влияет на миграцию, созревание, и функциональную активность иммунных клеток, тогда, как на молекулярном уровне лактоферрин, помимо связывания с железом, взаимодействует с различными регуляторными факторами (как растворимыми, так и мембранными), и изменяет их активность. Настоящая статья посвящена обзору нашего современного понимания механизмов защитного действия лактоферрина на различных уровнях.

Введение.

После открытия белка лактоферрина (ЛФ) в молоке, он был назван лактотрансферрин, что подчеркивало его предполагаемую функциональную близость к трансферрину (1). Установление высокой гомологии ЛФ с молекулой сывороточного трансферрина (ТФ) подтверждало то, что ЛФ является железосвязывающим белком. Открытие других свойств ЛФ произошло после того, как были открыты способности этого белка, помимо возможности образовывать комплекс с металлом, связываться с микроорганизмами, клетками организма, и факторами иммунной системы организма млекопитающих. Помимо прямого защитного эффекта ЛФ против бактерий, вирусов, и эукариотических патогенов, ряд экспериментов указывал на то, что этот белок является также модулятором иммунных процессов. Эти свойства ЛФ в настоящее время получили многочисленные подтверждения в исследованиях in vitro и in vivo на животных и человеке, причем результаты некоторых опытов носит противоречивый характер. При изучении модуляционных процессов получение неоднозначных результатов вполне допустимо, потому что, положительный, негативный, или нейтральный эффекты модулирующего агента находятся в прямой зависимости от текущего статуса организма, его состояния. Более того, в регуляционные процессы иммунитета вовлечено очень много факторов, что затрудняет проведение четкой дифференциации действия только молекулы ЛФ на исследуемый организм. Тем не менее, к настоящему времени нами получено большинство ответов на природу молекулярного механизма влияния ЛФ на развитие воспалительного процесса и иммунную реакцию организма. В этой статье мы попытаемся детально рассмотреть и описать наши современные знания, касающиеся этих свойств ЛФ.

. Позиционирование ЛФ в защитной системе организма.

Относительное распределение ЛФ в организме.

Синтез и секреция ЛФ может осуществляться конституционно (например, синтез ЛФ секреторными железами), или под гормональным контролем, как в половых органах (2). Альтернативный синтез ЛФ происходит в клетках нейтрофилов на ранней стадии их дифференциации с последующим накоплением этого белка в цитозольных гранулах с возможным его секретирования под действием внешнего сигнала (3). По всей видимости, тип секреции ЛФ зависит от того, какую активность этот белок должен проявить. Так, ЛФ все время присутствует на поверхности слизистого эпителия, проявляя антимикробную активность, тогда, как его секреция в кровь или ткани происходят в ответ на воспаление. Этот белок синтезируется в апоформе (без железа) и присутствует в большинстве биологических жидкостей, например, в слюне, панкреатическом и желудочном соке, слезной жидкости, и, особенно, в молоке (1). ЛФ синтезируется эпителиальными клетками молочной железы, и его концентрация в молоке человека составляет от 1 г/л (в зрелом молоке) до 7 г/л (в молозиве) (4).

Помимо этого, ЛФ синтезируется в миелоцитах на их ранней стадии созревания и, в дальнейшем, входит в состав вторичных гранул нейтрофилов (3). В процессе воспаления, или в результате другой патологии, уровень ЛФ в биологических жидкостей значительно возрастает и может использоваться как биохимический маркер воспаления. Особенно это заметно для плазмы крови, где при нормальных условиях концентрация ЛФ составляет 0.4-2 мг/л, а при воспалении и остром сепсисе может возрастать до 200 мг/л (5,6).

В кровь ЛФ попадает при дегранулировании клеток нейтрофилов и затем быстро связывается и поглощается паренхимными клетками печени (7). Фактически, ЛФ, который определяется в плазме крови, не является абсолютным показателем концентрации этого белка, так как (а) нейтрофилы доставляют ЛФ перед дегрануляцией непосредственно к месту воспаления, и (б) ЛФ может связываться с мембранными глюкозаминогликанами или протеогликанами (8-10), так, что клетки могут создавать очень высокую локальную концентрацию этого белка на своей поверхности. Интересно, что именно иммобилизованный клетками ЛФ, а не свободный белок активирует эозинофилы в дыхательном эпителии (11).

Обзор ключевых функций ЛФ в системе защиты организма.

Защитные функции организма определяются врожденной и приобретенной иммунной системами, которые еще называют гуморальным и клеточным иммунитетом. ЛФ несомненно относится к системе врожденного иммунитета, или неспецифическому иммунитету. Тем не менее, ряд исследований указывают на то, что этот белок, по крайней мере, опосредованно, вовлечен в процессы клеточного иммунитета. Можно сказать, что организм обладает защитными противовоспалительными системами, где ЛФ является одним из ключевых факторов.

Наиболее изученным является механизм антибактериальной активности ЛФ, который секретируется на слизистые поверхности организма и препятствует развитию и колонизации патогенной микрофлоры, или просто лизирует бактерии. Антибактериальные свойства этого белка определяются его высоким сродством к железу и способностью разрушать мембраны микроорганизма при непосредственном контакте (12), тем не менее, эти активности ЛФ не являются предметом обсуждения настоящего обзора. Конститутивный синтез ЛФ и его секреция, а также транспорт этого белка нейтрофилами в очаг воспаления (13) несомненно, усиливают защитный эффект. Помимо своей антибактериальной активности, ЛФ отвечает за активацию или ингибирование функций иммунных клеток, участвующих в развитии процесса воспаления. Биохимически эти регуляторные функции ЛФ определяются его возможностью связывать ионы железа и непосредственно взаимодействовать с рядом биомолекул и мембранами иммунных клеток.

С одной стороны, экспериментальные данные свидетельствуют, что ЛФ действует на пролиферацию, дифференциацию, и активацию клеток, которые прямо или косвенно вовлечены в иммунный ответ организма. С другой стороны, ЛФ снижает противовоспалительные активности защитной системы. В процессе инфицирования ткани генерируется большое количество радикалов, которые разрушают клетки с освобождением железа. Этот окислительный процесс, наряду с экспрессией большого количества, так называемых, провоспалительных факторов, в основном интерлейкина-1 (IL-1) и фактора некроза опухоли альфа (TNF-a), приводит к септическому шоку (14). В этом случае противовоспалительная функция ЛФ проявляется не только в комплексовании с избытком железа, но и в связывании бактериальных провоспалительных агентов, таких как липополисахарид (ЛПС), и их клеточных рецепторов. В процессе связывания железа происходит детоксификация пораженной ткани, а связывание воспалительных индукторов снижает их эффект на активацию иммунных клеток и вовлечение их в дальнейшее развитие воспалительного процесса. Молекулярные и клеточные основы участия ЛФ в иммунных реакциях рассматриваются в следующих разделах этого обзора.

Структурные и функциональные свойства ЛФ, которые определяют его иммунно - модуляционные и противовоспалительные свойства.

Полноправный представитель семейства трансферрина, но с особенными свойствами.

Лактоферрин относится к семейству белков в котором трансферрин наиболее хорошо охарактеризован. Человеческий лактоферрин (чЛФ) представляет собой полипептид из 692 аминокислотных остатков (15), его трехмерная структура была определена с высоким разрешением (16). Оба белка, чЛФ и трансферрин, имеют чрезвычайно схожую структуру, но первичная гомология составляет только 60%. Различия особенно отмечаются в аминокислотных последовательностях, которые экстраполированы на поверхность белковой глобулы, которые и отвечают за физиологические активности этих биомолекул. Тогда, как изоэлектрическая точка трансферрина соответствует рН 6,5, чЛФ является основным белком с pI 8.5 – 9.0. Наибольший вклад в позитивный заряд этого белка вносит N – концевой участок, так называемый, лактоферрицин (ЛФц) (Рис.1а), который, как установлено, отвечает за многие защитные функции ЛФ (17). ЛФц выделен из нативной молекулы ЛФ после ограниченного протеолиза пепсином (для чЛФ аминокислотные последовательности 1-19 и 20-37, для коровьего ЛФ – 19-36) и содержал основные аминокислоты, образующие бета-слой и а-спиральную структуру, отвечающую за независимые от связывания железа функции ЛФ. Это относится не только к бактерицидной активности, но и к иммуннорегуляторным и противовоспалительным свойствам ЛФ (18). В настоящее время установлен еще один основной пептид в структуре ЛФ (остатки 268-284), который назвали лактоферрампин, показаны его бактерицидные активности против ряда патогенных микроорганизмов (19).

Интересен факт прочного связывания железа лактоферрином даже при рН 3 и ниже, тогда как трансферрин теряет связанный ион металла уже при рН 5.5. Биохимически это определяется присутствием дополнительной водородной связи между 2-мя лизиновыми остатками в трансферрине, что ослабляет его взаимодействие с ионом металла (20,21), тогда, как в молекуле ЛФ две доли белка более плотно прилегают друг к другу (22). Высокая аффинность ЛФ к железу усиливает не только его антибактериальные функции, но и позволяет ему проявлять антиоксидазные свойства, которые подробно будут рассмотрены ниже.

Связывание ЛФ с лигандами и рецепторами.

Катионный характер молекулы ЛФ позволяет ей связываться со многими биомолекулами, которые отрицательно заряжены, что делает затруднительным изучение специфического взаимодействия ЛФ с лигандами, а это важно в проявлении его иммуннорегуляторых свойств. Сульфатированные протеогликаны, присутствующие на поверхности клеток, на 80% определяют сорбцию ЛФ на клетках (10,23). Несмотря на низкую аффинность этого взаимодействия (Ка ~ 106 M) и ионный характер этого взаимодействия, считается общепринятым, что именно взаимодействие с протеогликанами определяет высокую плотность молекул ЛФ на поверхности клетки (несколько миллионов центров связывания для некоторых типов клеток) (23). Взаимодействие ЛФ с глюкозаминогликанами очень важно при регуляции воспаления. Основные функциональные домены молекулы ЛФ, определяющие взаимодействие этого белка с глюкозаминогликанами и свободным гепарином, были определены как аминокислотные последовательности 1GRRRRS6 и 28RKVR31 (9, 10, 23). Эти участки молекулы ЛФ образуют катионное «седло» (Рис1Б), которое связывает сульфатированную цепь лиганда (9).

Помимо протеогликанов, было открыто несколько клеточных рецепторов, которые модулируют сигнальные пути, определяют эндоцитоз, и проникновение ЛФ в ядро. Например, 105 kDa специфический рецептор, который идентифицирован на поверхности лимфоцитов, тромбоцитов, и клеток молочной железы, обеспечивает эндоцитоз ЛФ этими клетками (25-27). Относительно недавно было показано специфическое взаимодействие ЛФ с рецептором нуклеолин, который экспрессируется на поверхность делящихся клеток и так же, как и протеогликаны, отвечает за эндоцитоз и транспорт ЛФ в ядро (28). Еще до получения прямого экспериментального подтверждения такого взаимодействия, было много данных, указывающих на то, что нуклеолин является рецептором ЛФ, причем домены связывания этого белка в молекуле ЛФ отличаются от известных центров связывания.

Другой важный рецептор ЛФ – рецептор-подобный липопротеин, который не только обеспечивает эндоцитоз ЛФ, но и участвует в пролиферации остеобластов после контакта с ЛФ (29). Этот же рецептор найден на поверхности иммунных клеток, что указывает на его возможную роль в иммунномодуляционных процессах. И, наконец, показано, что белок 34 kDa, который локализован на мембранах клеток тонкого кишечника, отвечает за интернализацию ЛФ в клеточный цитозоль (30,31).

Отдельно рассматриваются растворимые отрицательно заряженные биомолекулы, которые связываются с ЛФ, что наиболее важно при проявлении этим белком противовоспалительных свойств. Прежде всего, это липополисахарид (ЛПС) Escherichia coli, который взаимодействует с ЛФ через свой липид А (32,33). В молекуле чЛФ было обнаружено 2 центра связывания ЛПС E. coli, которые локализованы в разных долях белка и имеют различные константы диссоциации (Кi 3.6нМ и 390нМ для N- и С-доли соответственно) (34).

Установлено, что обе последовательности 1GRRRR5 и 28RKVRGPP34, которые отвечают за взаимодействие с 105-kDa ЛФ рецептором, глюкозаминогликанами, и ДНК (9,10,24), участвуют вместе или раздельно в связывании с молекулами ЛПС с высокой аффинностью (34, 35). Показано, что такие провоспалительные факторы, как олигонуклеотиды с неметелированными CpG также нейтрализуются белком ЛФ (36). Наиболее важным считается взаимодействие с высокой биоспецифичностью (Kd ~ 16 нМ) между ЛФ и растворимым фактором CD14, который является рецептором для ЛПС (sCD14). Установлено, что ЛФ связывает не только свободный фактор sCD14, но и, через специальный механизм, комплексы sCD14 с ЛПС, или ЛипидА-олигосахарид (37).

Положительно заряженные домены ЛФ важны при взаимодействии с ЛПС, рецепторами, и воспалительными факторами (37). Более того, сам лактоферрицин, как отдельный пептид, взаимодействует с ЛПС (18,34,38,39), но отмечается, что это взаимодействие происходит не с липидом А эндотоксина, а другими отрицательно заряженными участками ЛПС молекулы (40).

Рисунок 1. Центры связывания чЛФ.

(A) Расположение N-домена (ак остатки 1–50);
(B) Центры взаимодействия с ЛПС, протеогликанами, и рецептором лимфоцитов

Является ли ЛФ сигнальной молекулой для клеток?

Связывание ЛФ с поверхностью клеток позволяет предположить, что этот белок может активировать таким образом дифференциацию и/или пролиферацию клеток. Ряд данных, изложенных ниже, подтверждают это предположение, однако еще не изучен биохимический механизм, как именно ЛФ активирует клетку. В связи с этим интересно недавнее открытие, где показано, что клеточный рецептор на поверхности остеобластов проявляет митогенную активность после связывания с ЛФ через р42/44 МАР-киназный метаболический сигнал (29). Такой же сигнальный путь был показан для лимфобластоцитов Т, которые содержат 105-kDa ЛФ рецептор (41). Высказывается предположение, что ЛФ может проникать в клеточное ядро и действовать, как активатор транскрипции (42). Это подтверждается последними исследованиями, которые указывают на то, что рецептор нуклеолин является возможным переносчиком ЛФ с поверхности клетки в ядро (28).

Было установлено, что ЛФ снижает экспрессию ЛПС-индуцируемых цитокинов в Т1-хелперах после интернализации в иммунную клетку и ингибирования действия ядерного транскрипционного фактора NF-kB (43). Механизм этого действия еще полностью не открыт, но известно, что именно фактор NF-kB играет критическую роль в процессе развития воспаления и иммунного ответа организма. Исследования Oh с соавторами (44) показывает сложную последовательность сигнальных реакций, в которых участвует ЛФ. Высокая концентрация этого белка работает как р53 трансактиватор генов, стимулируя действие ингибитора киназной активности белка, который, в свою очередь, регулирует фактор NF-kB и его связывание с ДНК. Эти же авторы предварительно установили трансактивацию гена матричной металлопротеиназы 1 через активацию лактоферрином МАР-киназного сигнала, отвечающего за реакцию организма на стресс (42).

Активация и ингибирование иммунной системы лактоферрином.

In vivo доказательства регуляторных функций ЛФ.

Получение прямых экспериментальных доказательств регуляции иммунной системы белком ЛФ крайне затруднительно, хотя в настоящее время для этих целей в опытах используют лабораторных животных с дефицитом по гену ЛФ (45). Впервые предположение участия этого белка в модуляции иммунного ответа было высказано в 1980г. (46) при наблюдении за пациентом с молекулярной мутацией, у которого белок ЛФ отсутствовал в нейтрофилах, но синтезировался внутренними железами (47) – этот больной страдал хроническими инфекционными воспалениями.

В настоящее время, в экспериментах с трансгенными мышами, несущих ген чЛФ, установлено, что эти животные более устойчивы к инфекционным заболеваниям (48). Такой же эффект наблюдался при прямом ингибировании ЛФ-ном роста Staphylococcus aureus и усилении активности Т-хелперных клеток 1 типа при экспрессии и накоплении ЛФ в животных тканях. Более того, заражаемость туберкулезом мышей, несущих дефект по белку 2b-микроглобулин, значительно снижалась после введения ЛФ (49). Пероральное применение ЛФ также защищает организм от ряда бактериальных инфекций (50), от летальной бактериемии животных (51,52) и при острых оральных кандидозах (53). Например, оральное введение ЛФ полностью защищает поросят от сепсиса, вызываемого энтеротоксинами (54).

Экспериментально установлено, что на молекулярном уровне экзогенный ЛФ подавляет экспрессию определенных цитокинов, в основном, провоспалительных (интерферон-g, интерлейкин-1b, -6, -5, -10, TNF-alpha, и стимулирующего фактора гранулоцитов-макрофагов GM-CSF (48,55-58). ЛФ-зависимая активация экспрессии наблюдается для таких антивоспалительных факторов, как IL-4 и IL-10 при пероральном введении этого белка лабораторным крысам с острыми колитами (59). На клеточном уровне наблюдается увеличение титра нормальных клеток - киллеров (NK) (60,61), усиливается фагоцитарный эффект (18,62), активируются нейтрофилы (63), и модулируется процесс миелопоэза (56).

Эффект ЛФ на гуморальный и клеточный иммунный ответ организма.

В in vitro экспериментах было показано, что ЛФ может ускорять созревание клеток, выполняя функцию альтернативного источника железа для Т-клеток (25,64), но последние исследования in vivo установили, что ЛФ, в основном, работает как фактор связывания железа и защищает организм от избытка этого металла (48,49). Практически, все механизмы активации лактоферрином иммунной системы включают этап непосредственного контакта этой биомолекулы с мембранами клеткок. Это предполагает наличие специфических рецепторов ЛФ, которые являются ключевыми эффекторами клеточного сигнала, эндоцитоза и/или транспорта ЛФ в ядро клетки (65). К сожалению, некоторые результаты изучения этих эффекторов противоречат друг другу.

Установлено, что ЛФ регулирует созревание и активацию лимфоцитов, проявляет дифференцирующий эффект на изолированные тимоциты и В-клетки (66,67), а также, связываясь с Т-клетками, усиливает экспрессию CD4 антигена (41). Более того, у больных с раком мочеполовых путей показано, что ЛФ регулирует экспрессию x цепи рецептора Т-клеток (68). Усиление клеточной литической активности – еще одна важная функция этого белка. ЛФ, экспрессируясь на поверхность зрелых нейтрофилов, может участвовать в связывании микроорганизмов (69). Массовое освобождение ЛФ из гранул происходит после индукции нейтрофилов TNF-a фактором (70,71), часть белка связывается с поверхностью нейтрофилов, но, как показано, и связанный, и свободный ЛФ, усиливает фагоцитарную активность нейтрофилов и моноцитов/макрофагов.

ЛФ является промотором подвижности клеток, образования супероксида, и продукции таких провоспалительных молекул, как NO, TNF-a и IL-8 (72–74) В последних исследованиях установлено, что ЛФ усиливает фагоцитарную клеточную активность против возбудителя S. aureus (75). Молекулярный механизм этих свойств лактоферрина по разным данным крайне неоднозначный. Известно, что фагоцитарная активность нейтрофилов регулируется производными комплимента, в частности, комплиментарным фактором С3. Тогда не понятно, как ЛФ активирует нейтрофилы, потому что он ингибирует классическую (76) и одновременно активирует альтернативную (75,77) реакции комплимента. Последние работы показывают, что пептид лактоферрицин подавляет классическую реакцию комплимента, но не альтернативную реакцию (78), и что при связывании ЛФ с нейтрофилами также демонстрируется эта ингибирующая активность (79).

Ряд современных исследований указывают на иммуннотропную активность молекулы ЛФ, когда этот белок проявляет «эффект усилителя» при генерации гиперчувствительности организма (80), и пролиферирует действие вакцины БЦЖ на накопление Т-хелперных клеток в мышах (81). Этот эффект можно объяснить взаимодействием ЛФ с маннозным рецептором незрелых антиген-узнающих эпителиальных клеток (80). Именно такое взаимодействие показано в эксперименте, где ЛФ, связываясь с дендритными клетками через поверхностный белок DC-SIGN, блокирует взаимодействие этих клеток с ВИЧ гликопротеином gp120 и последующую вирусную трансмиссию (82).

Модуляция экспрессии цитокинов лактоферрином.

Антивоспалительные свойства.

В последние годы появилось много публикаций по изучению противовоспалительныч свойств ЛФ. Модуляция воспалительного процесса ЛФ-ном, в основном, осуществляется через ингибирование синтеза цитокинов, которые активируют иммунные клетки в очаге воспаления. Человеческий ЛФ супрессирует TNF-а, IL-1, и IL-6 синтез в мононуклеарных клетках in vitro and in vivo, реагирующих на присутствие энтеротоксина (43, 58, 83–85). ЛФ регулирует продуцирование цитокинов спленоцитами (86), и, дополнительно, ЛФ усиливает секрецию IL-10 и IL-4 (59). Подавление экспрессии провоспалительных регуляторных молекул может определяться ЛПС-связывающей активностью ЛФ через участок лактоферрицина (32-34), показано, что ЛФц самостоятельно, нейтрализует ЛПС активность (85,87). В этом процессе ЛФ является конкурентом специального ЛПС-связывающего белка крови, который переносит энтеротоксин на мембранный фактор mCD14, локализованный на клетках макрофагов (35).

ЛФ также ингибирует образование перекиси водорода, являясь промежуточным звеном при связывании ЛПС с L-селектином нейтрофилов (88). Более этого, взаимодействие между ЛФ и растворимой формой фактора CD14 ингибирует экспрессию IL-8 - хемокина, который активируется комплексом CD14-ЛПС в эндотелии (89).Существуют другие, описанные в литературе, механизмы провоспалительной активности ЛФ, отличные от связывания ЛПС и CD14. Подавление синтеза IL-6, который индуцируется TNF-a (85), является результатом ингибирования транскрипционного фактора NF-kB в моноцитных клетках, который, в свою очередь, связываясь с TNF-промотором, активирует его синтез (43). Другой пример – ингибирование иммуностимулирующего эффекта эндотоксином на В-клетки может зависеть от связывания ЛФ-ном неметелированных олигонуклеотидов (36). В коллаген-индуцированных экспериментальных моделях воспалительного процесса и моделях сепсиса на лабораторных животных, введение ЛФ в кровь приводило к усилению защиты организма и подавлению воспаления (90). Это подтверждалось и в экспериментах, когда пероральное введение ЛФ подавляет экспрессию фактора TNF-a и секрецию IL-10 при артритах (91). Рекомбинантный и молочный белок ЛФ (человека и коровы) также защищает лабораторных животных от энтеротоксин-индуцированного прерывания беременности, ингибируя синтез IL-6 (92). Как отмечалось выше, ЛФ может регулировать процессы воспаления, вызываемые вирусными заболеваниями. Так, Sano с соавторами (93) показали, что ЛФ снижал уровень инфицирования дыхательным синцитиальным вирусом (RSV), взаимодействуя с его поверхностным антигеном (93).

.Провоспалительные свойства ЛФ.

Ряд экспериментальных работ указывает на то, что ЛФ, при определенных условиях, активирует макрофаги и индуцирует уровень IL-8, TNF-a, и нитроксида (NO), являясь, таким образом, провоспалительным фактором (74). Комплекс ЛФ-ЛПС, в этом случае, является индуктором воспалительных медиаторов в макрофагах, действуя через Толл-подобный рецептор 4 (94). Более того, после инкубации с комплексом ЛФ-ЛПС, клетки становятся толерантными к действию энтеротоксина (94). ЛФ восстанавливает гуморальный иммунный ответ и увеличивает продукцию IL-6 альвеолярными и перитональными клетками при иммуннодефицитном состоянии (95,96). В этой же экспериментальной модели показано, что ЛФ повышал титр CD3+ T-клеток, таким образом, восстанавливая передаваемый этими клетками иммунный ответ при воспалении (97). Пероральное введение ЛФ защищает организм от потери веса и усиливает цитокиновый сигнал при инфицировании вирусом герпеса (98). Нативная форма ЛФ, или его пепсиновый гидролизат, индуцирует синтез IL-18 эпителиальными клетками малого кишечника, что вызывает изменение уровня экспрессии ряда генов провоспалительных факторов, включая, интерферон-гамма (IFN-g) (99). Авторы этого исследования приходят к выводу, что такой механизм, по-видимому, является основным при подавлении лактоферрином процессов канцерогенеза и развития метастазов. Помимо этого, индукция синтеза IL-18 в плазме крови приводит к блокированию эндотелиального роста, что может объяснить ингибирование ангиогенеза лактоферрином вокруг опухолевых клеток (100).

Введение препарата ЛФ в течении определенного времени больным с хроническим гепатитом С приводит к смещению провоспалительного процесса в периферийной крови в сторону образования Т1 хелперных цитокинов, которые существенно усиливают действие традиционной интерфероновой терапии гепатитов (101). Усиление экспрессии IFN-g и тканевого некротического фактора альфа (TNF-a) лимфатическими клетками слизистой половых органов под действием ЛФ усиливает термолабильность и гибель Candida albicans (53).

Роль ЛФ в стимулировании и привлечении лейкоцитов в очаги воспаления.

Взаимодействие ЛФ с ЛПС и с растворимой формой фактора CD14 приводит не только к активации иммунных клеток, но и к синтезу специальных адгезирующих молекул на поверхности эндотелиальных клеток, которые мобилизуют и направляют лейкоциты в очаги воспаления. В частности, ЛФ индуцирует экспрессию эндотелиальными клетками человека белка Е-селектина, межклеточного адгезирующего фактора 1 ((ICAM-1) и IL-8 (88,89). Указывается, что ЛФ конкурирует с хемокинами за их связывание с протеогликанами и последующее их взаимодействие с лейкоцитами. Был установлен интересный факт, когда при пероральном введении ЛФ происходит защита кишечника от воспаления при приеме нестероидных лекарств за счет снижения миграции нейтрофилов в поражаемые ткани (102). С другой стороны, показано, что ЛФ мобилизует нейтрофилы к очагу воспаления при повышенной бактериемии (103). Так, Takakura с соавторами (53) установили, что снижение оральных кандидозов под действием ЛФ происходит за счет увеличения числа лейкоцитов и секретируемых ими цитокинов в очаге воспаления.

Роль ЛФ в гомеостазе железа и детоксификации.

ЛФ в настоящее время рассматривается как мощный регулятор общих воспалительных процессов. Связывание этой молекулой свободного железа, который накапливается в пораженных тканях и катализирует образование токсичных гидроксильных радикалов, является одним из основных антивоспалительных свойств ЛФ. Апоформа этого белка (ЛФ без железа) секретируется из гранул нейтрофилов непосредственно в очаг воспаления, прочно связывает даже при низких рН ионы железа, и таким образом проводит детоксификацию пораженной ткани. При нейродегенеративных заболеваниях, где ионы железа приводят к окислительному стрессу и гибели нервных клеток, наблюдается повышенное присутствие ЛФ в определенных областях мозга (104). Этот факт, а также то, что при таких заболеваниях происходит активация трансцитозного переноса ЛФ из крови в нервную ткань с острым воспалением (105), указывают на защитную роль ЛФ от окислительного шока и поражения мозга.

ЛФ и аллергии.

Результаты In vivo показывают, что ЛФ защищает от аллергии кожные покровы и легкие (106,107). Аллергия сопровождается активацией тучных клеток и базофилов, а также миграцией антиген-узнающих клеток которые индуцируются факторами IL-1b и TNF-a (108). Пациенты с аллергиями имеют повышенный уровень белка ЛФ в биологических жидкостях. При кожных аллергиях ЛФ, связываясь с кератоцитами, ингибирует секрецию TNF-a этими клетками (109). Дополнительно, установлено, что ЛФ инактивирует триптазу, провоспалительный протеолитический фермент, который экстрагируется тучными клетками (110). ЛФ вытесняет триптазу из ее комплекса с гепарином и таким образом подавляет ее протеолическую активность. Было показано, что тучные клетки захватывают молекулу ЛФ, которая после этого ингибирует не только триптазу, но и проаллергены химазу и катепсин Г (111). Эти же авторы показали, что ЛФ ингибирует образование гистамина и триптазы в тучных клетках толстого кишечника (112,113).

ЛФ как маркер при воспалительных заболеваниях.

В связи с тем, что уровень ЛФ может драматически возрастать во время сепсиса в биологических жидкостях (5,6), естественно, возникает вопрос о возможности использовать концентрационные параметры этого белка, как биомаркер воспалительных процессов.

Например, во время ревматоидных артритов, уровень ЛФ возрастает в мочеполовых выделениях, но не в крови. ЛФ считается достоверным маркеров активации нейтрофилов при ревматоидах, но не является маркером активности и динамики воспалительного заболевания (114). Повышение концентрации ЛФ во время острого респираторного синдрома (SARS) является, скорее всего, показателем активности системы врожденного иммунитета, а не специфического иммунитета. Показана 148-кратная активация экспрессии гена ЛФ периферийными мононуклеарными клетками во время заболевания SARS (115). Приведенные наблюдения открывают новые возможности при диагностике и лечении этого синдрома.

Достоверная диагностика острого кишечного воспаления у пациентов с диареей и желудочно-кишечной болью возможна по анализу концентрации фекального ЛФ (116, 117). Уровень ЛФ резко возрастает в отобранных образцах, что коррелирует с активацией лейкоцитов в очаге воспаления. Показано, что ЛФ является высокочувствительным и специфическим биомаркером хронического желудочного воспаления (118). Стабильность этого показателя делает количественный анализ ЛФ важным тестом в клинической лаборатории (119).

И, наконец, Buderus с соавторами [120] идентифицировали ЛФ, как маркер кишечного воспаления и терапевтического ответа пациента при болезни Крона. Таким образом, определение уровня ЛФ можно использовать в качестве клинического маркера при различных воспалительных заболеваниях.

Применение ЛФ в профилактике воспалительных заболеваний и инфекциях.

Установлено, ЛФ оказывает влияние на неспецифический иммунный ответ у ряда промысловых рыб (121), в то время как гуморальный иммунный ответ не зависит от введения ЛФ. Этот белок эффективно модулирует врожденную иммунную клеточную активность рыб, в основном, нормальную цитотоксичную активность, и воспалительные процессы в дыхательной системе. В настоящее время ЛФ используется как иммунномодулятор при разведении морских лещей (gilthead seabream) (121).

Показано усиление экспрессии IFN-a и активности нормальных клеток-киллеров у добровольцев при приеме липосомальной формы ЛФ (122). Пероральное введение ЛФ снижает концентрацию эндотоксина в кишечном тракте, и, подобно бифидобактерии, увеличивает титр В и Т клеток и экспрессию цитокинов (IL-6, TNF-a, IFN-g) в межворсинковом пространстве слизистой кишечника (123). Интересно, что ЛФ может переносится из малого кишечника в кровь через мезентеральную лимфатическую систему (124). Тем не менее, пероральное введение ЛФ используется, прежде всего, для регуляции системного иммунного ответа слизистой пищеварительного тракта (125). Добавление ЛФ в питьевую воду не приводит к видимым изменениям в иммунном статусе организма, а постоянное введение этого белка в желудок или использование при длительной диете, приводит к синтезу анти-ЛФ иммуноглобулинов.

Все клинические модели использования ЛФ при пероральном введении показывают усиление системного клеточного ответа через Т2 хелперные клетки с одной стороны, и модуляции иммунной реакции слизистой через увеличении синтеза кишечных иммуноглобулинов А (IgA). Однако, при длительном использовании ЛФ, также активируется гуморальный иммунный ответ с синтезом IgG2а антител в крови и возрастает уровень цитокинов, присущих Т1 хелперные клетки. Это должно учитываться при разработке перорального режима введения ЛФ.

Заключение:

Можно утверждать, что в последние годы произошел важный прорыв в изучении ЛФ, особенно, в открытии механизма инактивации этим белком экзогенных провоспалительных факторов. ЛФ также связывает избыток железа и энтеротоксина, таким образом, модулируя иммунные процессы, которые активируются этими компонентами. Дополнительно, ЛФ взаимодействует с рядом клеточных рецепторов таких, как протеогликаны, аполипопротеин Е/липопротеин низкой плотности (ApoE/LDL) - рецептор, нуклеолин, рецепторы лимфоцитов и энтероцитов. Результатом этого взаимодействия является индукция определенных биологических процессов, изучение которых требует время.

Свойства ЛФ зависят от уровня его экспрессии, секреции, и присутствии в определенном месте организма при его определенном физиологическом состоянии. При нормальных условиях ЛФ синтезируется клетками желез и экспрессируется на поверхность слизистой, создавая мощный бактериостатический и бактерицидный барьер между окружающей средой и организмом. Нейродегенеративные заболевания или воспалительный процесс приводит к дегрануляции нейтрофилов в очаге воспаления, активации специальных нейронов и микроглиадильных клеток, соответственно (104), что драматически увеличивает уровень ЛФ в области воспаления.

Этот белок взаимодействует с рецепторами различных типов клеток с последующим его эндоцитозом. На рисунке 2 изображены процессы, которые модулируются ЛФ. В основном, связывание железа, ЛПС, и CD14, модуляция действия иммунных факторов ЛФ-ном приводит к снижению воспалительного ответа организма, как показано во многих исследованиях .

Дополнительное введение ЛФ в диету дает весьма определенные положительные физиологические эффекты. В этом случае очень важен источник выделения лактоферрина, трансгенный или натуральный белок используется, из какого организма, и т.д. Например, лактоферрин из коровьего молока имеет абсолютно другой тип и процент гликозилирования по сравнению с человеческим белком, что может приводить к проявлению неспецифических активностей и потерей других, ожидаемых свойств лактоферрина. Естественно, что при введении в кровь пациента такой белок воспринимается как чужеродный агент и может вызвать анафилактический шок.

Рисунок 2.

Регуляция воспалительного процесса под действием белка ЛФ. Голубым показаны физиологические процессы, Красным обозначены биологические реакции в ответ на инфекцию или нейродегенеративные процессы, Зеленые стрелы указывают на ингибирование, вызываемое освобождением ЛФ в воспалительный очаг.

Список литературы:

1. Montreuil J., Tonnelat J. and Mullet S. (1960) Preparation et proprietes de la lactosiderophiline (lactotransferrine) du lait de femme. Biochim. Biophys. Acta 45: 413–421
2. Teng C. T., Beard C. and Gladwell W. (2002) Differential expression and estrogen response of lactoferrin gene in the female reproductive tract of mouse, rat and hamster. Biol. Reprod. 67: 1439–1449
3. Masson P. L., Heremans J. F. and Schonne E. (1969) Lactoferrin, an iron-binding protein in neutrophilic leukocytes. J. Exp. Med. 130: 643–658
4. Houghton M. R., Gracey M., Burke V., Bottrell C. and Spargo R. M. (1985) Breast milk lactoferrin levels in relation to maternal nutritional status. J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 4: 230–233
5. Bennett R. M. and Kokocinski T. (1978) Lactoferrin content of peripheral blood cells. Br. J. Haematol. 39: 509–521
6. Maaks S., Yan H. Z. and Wood W. G. (1989) Development and evaluation of luminescence based sandwich assay for plasma lactoferrin as a marker for sepsis and bacterial infections in pediatric medicine. J. Biolumines. Chemilumines. 3: 221–226
7. Debanne M.T., Regoeczi E., Sweeney G.D. and Krestynski F. (1985) Interaction of human lactoferrin with the rat liver. Am. J. Physiol. 248: G463–469
8. Ziere G.J., Kruijt J.K., Bijsterbosch M.K. and Van Berkel T.J. (1996) Recognition of lactoferrin and aminopeptidase M-modified lactoferrin by the liver: involvement of proteoglycans and the remnant receptor. Biochem. J. 313: 289–295
9. Mann D. M., Romm E. and Migliorini M. (1994) Delineation of the glycosaminoglycan-binding site in the human infl amatory response protein lactoferrin. J. Biol. Chem. 269: 23661–23667
10. Legrand D., van Berkel P.H., Salmon V., van Veen H.A., Slomianny M.C., Nuijens J.H. et al. (1997) The N-terminal Arg2, Arg3 and Arg4 of human lactoferrin interact with sulphated molecules but not with the receptor present on Jurkat human lymphoblastic T-cells. Biochem. J. 327: 841–846
11. Thomas L. L., Xu W. and Ardon T. T. (2002) Immobilized lactoferrin is a stimulus for eosinophil activation. J. Immunol. 169: 993–999
12. Ward P. P. and Conneely O.M. (2004) Lactoferrin: role in iron homeostasis and host defense against microbial infection. Biometals 17: 203–208
13. Masson P. L., Heremans J. F. and Schonne E. (1969) Lactoferrin, an iron-binding protein in neutrophilic leukocytes. J. Exp. Med. 130: 643–658
14. Annane D., Bellissant E. and Cavaillon J. M. (2005) Septic shock. Lancet 365: 63–78
15. Rey M. W., Woloshuk S. L., DeBoer H. A. and Pieper F. R. (1990) Complete nucleotide sequence of human mammary gland lactoferrin. Nucl. Acids Res. 18: 5288–5295
16. Anderson B. F., Baker H. M., Dodson E. J., Norris G. E., Rumball S. V., Waters J. M. et al. (1987) Structure of human lactoferrin at 3.2- resolution. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84: 1769–1773
17. Wakabayashi H., Takakura N., Teraguchi S. and Tamura Y. (2003) Lactoferrin feeding augments peritoneal macrophage activities in mice intraperitoneally injected with inactivated Candida albicans. Microbiol. Immunol. 47: 37 43
18. Wakabayashi H., Takase M. and Tomita M. (2003) Lactoferricin derived from milk protein lactoferrin. Curr. Pharm. Des. 9: 1277–1287
19. Van der Kraan M. I., Groenink J., Nazmi K., Veerman E. C. and Bolscher J. G. (2004) Lactoferrampin: a novel antimicrobial peptide in the N1-domain of bovine lactoferrin. Peptides 25: 177–183
20. Baker H. M., Anderson B. F. and Baker E. N (2003) Dealing with iron: common structural principles in proteins that transport iron and heme. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 100: 3579–3583
21. Mazurier J. and Spik G. (1980) Comparative study of the ironbinding properties of human transferrins. I. Complete and sequential iron saturation and desaturation of the lactotransferrin. Biochim. Biophys. Acta 629: 399–408
22. Anderson B. F., Baker H. M., Norris G. E., Rumball S. V. and Baker E. N. (1990) Apolactoferrin structure demonstrates ligand- induced conformational change in transferrins. Nature 344: 784–787
23. Damiens E., El Yazidi I., Mazurier J., Elass-Rochard E., Duthille I., Spik G. et al. (1998) Role of heparan sulphate proteoglycans in the regulation of human lactoferrin binding and activity in the MDA-MB-231 breast cancer cell line. Eur. J. Cell. Biol. 77: 344–351
24. Van Berkel P. H., Geerts M. E., Van Veen H. A., Mericskay M., de Boer H. A. and Nuijens J. H. (1997) N-terminal stretch Arg2, Arg3, Arg4 and Arg5 of human lactoferrin is essential for binding to heparin, bacterial lipopolysaccharide, human lysozyme and DNA. Biochem. J. 15: 145–151
25. Mazurier J., Legrand D., Hu W. L., Montreuil J. and Spik G. (1989) Expression of human lactotransferrin receptors in phytohemagglutinin-stimulated human peripheral blood lymphocytes. Eur. J. Biochem. 179: 481–487
26. Leveugle B., Mazurier J., Legrand D., Mazurier C., Montreuil J. and Spik G. (1993) Lactotransferrin binding to its platelet receptor inhibits platelet aggregation. Eur. J. Biochem. 213: 1205–1211
27. Damiens E., Mazurier J., El Yazidi I., Masson M., Duthille I., Spik G. et al. (1998) Effects of human lactoferrin on NK cell cytotoxicity against haematopoietic and epithelial tumour cells. Biochim. Biophys. Acta 1402: 277–287
28. Legrand D., Vigie K., Said E. A., Elass E., Masson M., Slomianny M. C. et al. (2004) Surface nucleolin participates in both the binding and endocytosis of lactoferrin in target cells. Eur. J. Biochem. 271: 303–317
29. Grey A., Banovic T., Zhu Q., Watson M., Callon K., Palmano K. et al. (2004) The low-density lipoprotein receptor-related protein 1 is a mitogenic receptor for lactoferrin in osteoblastic cells. Mol. Endocrinol. 18: 2268–2278
30. Ashida K., Sasaki H., Suzuki Y.A. and Lonnerdal B. (2004) Cellular internalization of lactoferrin in intestinal epithelial cells. Biometals 17: 311–315
31. Suzuki Y. A. and Lonnerdal B. (2002) Characterization of mammalian receptors for lactoferrin. Biochem. Cell. Biol. 80: 75–80
32. Appelmelk B. J., An Y. Q., Geerts M., Thijs B. G., De Boer H. A., MacLaren D. M. et al. (1994) Lactoferrin is a lipid A-binding protein. Infect. Immun. 62: 2628–2632
33. Brandenburg K., Jurgens G., Muller M., Fukuoka S. and Koch M. H. (2001) Biophysical characterization of lipopolysaccharide and lipid A inactivation by lactoferrin. Biol. Chem. 382: 1215–1225
34. Elass-Rochard E., Roseanu A., Legrand D., Trif M., Salmon V., Motas C. et al. (1995) Lactoferrin-lipopolysaccharide interaction: involvement of the 28-34 loop region of human lactoferrin in the high-affi nity binding to E. coli 055B5 lipopolysaccharide. Biochem. J. 312: 839–845
35. Elass-Rochard E., Legrand D., Salmon V., Roseanu A., Trif M., Tobias P. S. et al. (1998) Lactoferrin inhibits the endotoxin interaction with CD14 by competition with the lipopolysaccharide- binding protein. Infect. Immun. 66: 486–491
36. Britigan B. E., Lewis T. S., Waldschmidt M., McCormick M. L. and Krieg A. M. (2001) Lactoferrin binds CpG-containing oligonucleotides and inhibits their immunostimulatory effects on human B cells. J. Immunol. 167: 2921–2928
37. Baveye S., Elass E., Fernig D. G., Blanquart C., Mazurier J. and Legrand D. (2000) Human lactoferrin interacts with soluble CD14 and inhibits expression of endothelial adhesion molecules, E-selectin and ICAM-1, induced by the CD14-lipopolysaccharide complex. Infect. Immun. 68: 6519–6525
38. Japelj B. T., Pristov-Ek P., Majerle A. and Jerala R. (2005) Structural origin of endotoxin neutralization and antimicrobial activity of a lactoferrin-based peptide. J. Biol. Chem. Epub ahead of print
39. Chapple D. S., Hussain R., Joannou C. L., Hancock R. E., Odell E., Evans R. W. et al. (2004) Structure and association of human lactoferrin peptides with Escherichia coli lipopolysaccharide. Antimicrob. Agents Chemother. 48: 2190–2198
40. Farnaud S., Spiller C., Moriarty L. C., Patel A., Gant V., Odell E. W. et al. (2004) Interactions of lactoferricin-derived peptides with LPS and antimicrobial activity. FEMS Microbiol. Lett. 233: 193–199
41. Dhennin-Duthille I., Masson M., Damiens E., Fillebeen C., Spik G. and Mazurier J. (2000) Lactoferrin upregulates the expression of CD4 antigen through the stimulation of the mitogen- activated protein kinase in the human lymphoblastic T Jurkat cell line. J. Cell. Biochem. 79: 583–593
42. Oh S.M., Hahm D.H., Kim I.H. and Choi S.Y. (2001) Human neutrophil lactoferrin trans-activates the matrix metalloproteinase 1 gene through stress-activated MAPK signaling modules. J. Biol. Chem. 276: 42575–42579
43. Haversen L., Ohlsson B. G., Hahn-Zoric M., Hanson L. A. and Mattsby-Baltzer I. (2002) Lactoferrin down-regulates the LPSinduced cytokine production in monocytic cells via NF-kappaB. Cell. Immunol. 220: 83–95
44. Oh S. M., Pyo C. W., Kim Y. and Choi S. Y. (2004) Neutrophil lactoferrin upregulates the human p53 gene through induction of NF-kappaB activation cascade. Oncogene 23: 8282–8291
45. Ward P. P. and Conneely O. M. (2004) Lactoferrin: role in iron homeostasis and host defense against microbial infection. Biometals 17: 203–208.
46. Breton-Gorius J., Mason D. Y., Buriot D., Vilde J.-L. and Griscelli M. D. (1980) Lactoferrin defi ciency as a consequence of a lack of specifi c granules in neutrophils from a patient with recurrent infections. Am. J. Pathol. 99: 413–428
47. Gordon D., Davis J., Fox P., Malech H., Gallin J., Baraniuk J. et al. (1989) Glandular secretion of lactoferrin in a patient with neutrophil lactoferrin defi ciency. J. Allergy Clin. Immunol. 84: 914–919
48. Guillen C., McInnes I. B., Vaughan D. M., Kommajosyula S., Van Berkel P. H., Leung B. P. et al. (2002) Enhanced Th1 response to Staphylococcus aureus infection in human lactoferrin- transgenic mice. J. Immunol. 168: 3950–3957
49. Schaible U. E., Collins H. L., Priem F. and Kaufmann S. H. (2002) Correction of the iron overload defect in beta-2-microglobulin knockout mice by lactoferrin abolishes their increased susceptibility to tuberculosis. J. Exp. Med. 196: 1507–1513
50. Van Hooijdonk A. C. , Kussendrager K. D. and Steijns J. M. (2000) In vivo antimicrobial and antiviral activity of components in bovine milk and colostrum involved in non-specifi c defence. Br. J. Nutr. 84: S127–134
51. Zagulski T., Lipinski P., Zagulska A., Broniek S. and Jarzabek Z. (1989) Lactoferrin can protect mice against a lethal dose of E. coli in experimental infection in vivo. Br. J. Exp. Pathol. 70: 697–704
52. Ochoa T. J., Noguera-Obenza M., Ebel F., Guzman C. A., Gomez H. F. and Cleary T. G. (2003) Lactoferrin impairs type III secretory system function in enteropathogenic Escherichia coli. Infect. Immun. 71: 5149–5155
53. Takakura N., Wakabayashi H., Ishibashi H., Yamauchi K., Teraguchi S., Tamura Y. et al. (2004) Effect of orally administered bovine lactoferrin on the immune response in the oral candidiasis murine model. J. Med. Microbiol. 53: 495–500
54. Lee W. J., Farmer J. L., Hilty M. and Kim Y. B. (1998) The protective effects of lactoferrin feeding against endotoxin lethal shock in germfree piglets. Infect. Immun. 66: 1421–1426
55. Sawatzki G. and Rich I. N. (1989) Lactoferrin stimulates colony stimulating factor production in vitro and in vivo. Blood Cells 15: 371–385
56. Broxmeyer H. E., Williams D. E., Hangoc G., Cooper S., Gentile P., Shen R. N. et al. (1987) The opposing actions in vivo on murine myelopoiesis of purifi ed preparations of lactoferrin and the colony stimulating factors. Blood Cells 13: 31–48
57. Machnicki M., Zimecki M. and Zagulski T. (1993) Lactoferrin regulates the release of tumour necrosis factor alpha and interleukin 6 in vivo. Int. J. Exp. Pathol. 74: 433–439
58. Kruzel M. L., Harari Y., Mailman D., Actor J. K. and Zimecki M. (2002) Differential effects of prophylactic, concurrent and therapeutic lactoferrin treatment on LPS-induced infl amatory responses in mice. Clin. Exp. Immunol. 130: 25–31
59. Togawa J., Nagase H., Tanaka K., Inamori M., Nakajima A., Ueno N. et al. (2002) Oral administration of lactoferrin reduces colitis in rats via modulation of the immune system and correction of cytokine imbalance. J. Gastroenterol. Hepatol. 17: 1291–1298
60. Shimizu K., Matsuzawa H., Okada K., Tazume S., Dosako S., Kawasaki Y. et al. (1996) Lactoferrin-mediated protection of the host from murine cytomegalovirus infection by a T-cell-dependent augmentation of natural killer cell activity. Arch. Virol. 141: 1875–1889
61. Yamauchi K., Wakabayashi H., Hashimoto S., Teraguchi S., Hayasawa H. and Tomita M. (1998) Effects of orally administered bovine lactoferrin on the immune system of healthy volunteers. Adv. Exp. Med. Biol. 443: 261–265
62. Szuster-Ciesielska A., Kaminska T. and Kandefer-Szerszen M. (1995) Phagocytosis-enhancing effect of lactoferrin on bovine peripheral blood monocytes in vitro and in vivo. Arch. Vet. Pol. 35: 63–71
63. Kurose I., Yamada T., Wolf R. and Granger D. N. (1994) P-selectin- dependent leukocyte recruitment and intestinal mucosal injury induced by lactoferrin. J. Leukoc. Biol. 55: 771–777
64. Mincheva-Nilsson L., Hammarstrom S. and Hammarstrom M. L. (1997) Activated human gamma delta T lymphocytes express functional lactoferrin receptors. Scand. J. Immunol. 46: 609–618
65. Suzuki Y. A. and Lonnerdal B. (2002) Characterization of mammalian receptors for lactoferrin. Biochem. Cell. Biol. 80: 75–80
66. Zimecki M., Mazurier J., Spik G. and Kapp J. A. (1995) Human lactoferrin induces phenotypic and functional changes in murine splenic B cells. Immunology 86: 122–127
67. Zimecki M., Mazurier J., Machnicki M., Wieczorek Z., Montreuil J. and Spik G. (1991) Immunostimulatory activity of lactotransferrin and maturation of CD4– CD8– murine thymocytes. Immunol. Lett. 30: 119–123
68. Frydecka I., Zimecki M., Bocko D., Kosmaczewska A., Teodorowska R., Ciszak L. et al. (2002) Lactoferrin-induced upregulation of x (zeta) chain expression in peripheral blood T lymphocytes from cervical cancer patients. Anticancer Res. 22: 1897–1901
69. Deriy L. V., Chor J. and Thomas L. L. (2000) Surface expression of lactoferrin by resting neutrophils. Biochem. Biophys. Res. Commun. 275: 241–246
70. Maneva A. I., Sirakov L. M. and Manev V. V. (1983) Lactoferrin binding to neutrophilic polymorphonuclear leucocytes. Int. J. Biochem. 15: 981–984
71. Afeltra A., Caccavo D., Ferri G. M., Adessi M. A., De Rosa F. G., Amoroso A. et al. (1997) Expression of lactoferrin on human granulocytes: analysis with polyclonal and monoclonal antibodies. Clin. Exp. Immunol. 109: 279–285
72. Gahr M., Speer C. P., Damerau B. and Sawatzki G. (1991) Infl uence of lactoferrin on the function of human polymorphonuclear leukocytes and monocytes. J. Leukoc. Biol. 49: 427–433
73. Shinoda I., Takase M., Fukuwatari Y., Shimamura S., Koller M. and Konig W. (1996) Effects of lactoferrin and lactoferricin on the release of interleukin 8 from human polymorphonuclear leukocytes. Biosci. Biotechnol. Biochem. 60: 521–523
74. Sorimachi K., Akimoto K., Hattori Y., Leiri T. and Niwa A. (1997) Activation of macrophages by lactoferrin: secretion of TNF-a, IL-8 and NO. Biochem. Mol. Biol. Int. 43: 79–87
75. Kai K., Komine K., Komine Y., Kuroishi T., Kozutsumi T., Kobayashi J. et al. (2002) Lactoferrin stimulates A Staphylococcus aureus killing activity of bovine phagocytes in the mammary gland. Microbiol. Immunol. 46: 187–194
76. Kijlstra A. and Jeurissen S. H. (1982) Modulation of classical C3 convertase of complement by tear lactoferrin. Immunology 47: 263–270
77. Rainard P. (1993) Activation of the classical pathway of complement by binding of bovine lactoferrin to unencapsulated Streptococcus agalactiae. Immunology 79: 648–652
78. Samuelsen O., Haukland H. H., Ulvatne H. and Vorland L. H. (2004) Anti-complement effects of lactoferrin-derived peptides. FEMS Immunol. Med. Microbiol. 41: 141–148
79. Miyauchi H., Hashimoto S., Nakajima M., Shinoda I., Fukuwatari Y. and Hayasawa H. (1998) Bovine lactoferrin stimulates the phagocytic activity of human neutrophils: identifi cation of its active domain. Cell. Immunol. 187: 34–37
80. Zimecki M., Kocieba M. and Kruzel M. (2002) Immunoregulatory activities of lactoferrin in the delayed type hypersensitivity in mice are mediated by a receptor with affi nity to mannose. Immunobiology 205: 120–131
81. Hwang S. A., Kruzel M. L. and Actor J. K. (2005) Lactoferrin augments BCG vaccine effi cacy to generate T helper response and subsequent protection against challenge with virulent Mycobacterium tuberculosis. Int. Immunopharmacol. 5: 591–599
82. Groot F., Geijtenbeek T. B., Sanders R. W., Baldwin C. E., Sanchez-Hernandez M., Floris R. et al. (2005) Lactoferrin prevents dendritic cell-mediated human immunodefi ciency virus type 1 transmission by blocking the DC-SIGN-gp120 interaction. J. Virol. 79: 3009–3015
83. Miyazawa K., Mantel C., Lu L., Morrison D. C. and Broxmeyer H. E. (1991) Lactoferrin-lipopolysaccharide interactions. Effect on lactoferrin binding to monocyte/macrophage-differentiated HL-60 cells. J. Immunol. 146: 723–729
84. Crouch S. P., Slater K. J. and Fletcher J. (1992) Regulation of cytokine release from mononuclear cells by the iron-binding protein lactoferrin. Blood 1: 235–240
85. Mattsby-Baltzer I., Roseanu A., Motas C., Elverfors J., Engberg I. and Hanson L. A. (1996) Lactoferrin or a fragment thereof inhibits the endotoxin-induced interleukin-6 response in human monocytic cells. Pediatr. Res. 40: 257–262
86. Zimecki M., Dawiskiba J., Zawirska B., Krawczyk Z. and Kruzel M. (2003) Bovine lactoferrin decreases histopathological changes in the liver and regulates cytokine production by splenocytes of obstructive jaundiced rats. Infl amm. Res. 52: 305–310
87. Zhang G. H., Mann D. M. and Tsai C. M. (1999) Neutralization of endotoxin in vitro and in vivo by a human lactoferrinderived peptide. Infect. Immun. 67: 1353–1358
88. Baveye S., Elass E., Mazurier J. and Legrand D. (2000) Lactoferrin inhibits the binding of lipopolysaccharides to L-selectin and subsequent production of reactive oxygen species by neutrophils. FEBS Lett. 469: 5–8
89. Elass E., Masson M., Mazurier J. and Legrand D. (2002) Lactoferrin inhibits the lipopolysaccharide-induced expression and proteoglycan-binding ability of interleukin-8 in human endothelial cells. Infect. Immun. 70: 1860–1866
90. Guillen C., McInnes I. B., Vaughan D., Speekenbrink A. B. and Brock J. H. (2000) The effects of local administration of lactoferrin on infl ammation in murine autoimmune and infectious arthritis. Arthritis Rheum. 43: 2073–2080
91. Hayashida K., Kaneko T., Takeuchi T., Shimizu H., Ando K. and Harada E. (2004) Oral administration of lactoferrin inhibits infl ammation and nociception in rat adjuvant-induced arthritis. J. Vet. Med. Sci. 66: 149–154
92. Sasaki Y., Otsuki K., Hasegawa A., Sawada M., Chiba H., Negishi M. et al. (2004) Preventive effect of recombinant human lactoferrin on lipopolysaccharide-induced preterm delivery in mice. Acta. Obstet. Gynecol. Scand. 83: 1035–1038
93. Sano H., Nagai K., Tsutsumi H. and Kuroki Y. (2003) Lactoferrin and surfactant protein A exhibit distinct binding specifi city to F protein and differently modulate respiratory syncytial virus infection. Eur. J. Immunol. 33: 2894–2902
94. Na Y. J., Han S. B., Kang J. S., Yoon Y. D., Park S. K., Kim H. M. et al. (2004) Lactoferrin works as a new LPS-binding protein in infl ammatory activation of macrophages. Int. Immunopharmacol. 4: 1187–1199
95. Artym J., Zimecki M. and Kruzel M. L. (2003) Reconstitution of the cellular immune response by lactoferrin in cyclophosphamide- treated mice is correlated with renewal of T cell compartment. Immunobiology 207: 197–205
96. Artym J., Zimecki M. and Kruzel M. L. (2004) Effects of lactoferrin on IL-6 production by peritoneal and alveolar cells in cyclophosphamide-treated mice. J. Chemother. 16: 187–192
97. Artym J., Zimecki M., Paprocka M. and Kruzel M. L. (2003) Orally administered lactoferrin restores humoral immune response in immunocompromised mice. Immunol. Lett. 89: 9–15
98. Wakabayashi H., Kurokawa M., Shin K., Teraguchi S., Tamura Y. and Shiraki K. (2004) Oral lactoferrin prevents body weight loss and increases cytokine responses during herpes simplex virus type 1 infection of mice. Biosci. Biotechnol. Biochem. 68: 537–544
99. Iigo M., Shimamura M., Matsuda E., Fujita K., Nomoto H., Satoh J. et al. (2004) Orally administered bovine lactoferrin induces caspase-1 and interleukin-18 in the mouse intestinal mucosa: a possible explanation for inhibition of carcinogenesis and metastasis. Cytokine 25: 36–44
100. Shimamura M., Yamamoto Y., Ashino H., Oikawa T., Hazato T., Tsuda H. et al. (2004) Bovine lactoferrin inhibits tumorinduced angiogenesis. Int. J. Cancer. 111: 111–116
101. Ishii K., Takamura N., Shinohara M., Wakui N., Shin H., Sumino Y. et al. (2003) Long-term follow-up of chronic hepatitis C patients treated with oral lactoferrin for 12 months Hepatol. Res. 25: 226–233
102. Dial E. J., Dohrman A. J., Romero J. J. and Lichtenberger L. M. (2005) Recombinant human lactoferrin prevents NSAIDinduced intestinal bleeding in rodents. J. Pharm. Pharmacol. 57: 93–99
103. Zimecki M., Artym J., Chodaczek G., Kocieba M. and Kruzel M. L. (2004) Protective effects of lactoferrin in Escherichia coli-induced bacteremia in mice: relationship to reduced serum TNF alpha level and increased turnover of neutrophils. Infl amm. Res. 53: 292–296
104. Fillebeen C., Ruchoux M. M., Mitchell V., Vincent S., BenaissaM. and Pierce A. (2001) Lactoferrin is synthesized by activated microglia in the human substantia nigra and its synthesis by the human microglial CHME cell line is upregulated by tumor necrosis factor alpha or 1-methyl-4-phenylpyridinium treatment. Brain Res. Mol. Brain Res. 96: 103–113
105. Fillebeen C., Dehouck B., Benaissa M., Dhennin-Duthille I., Cecchelli R. and Pierce A. (1999) Tumor necrosis factor-alpha increases lactoferrin transcytosis through the blood-brain barrier. J. Neurochem. 73: 2491–2500
106. Elrod K. C., Moore W. R., Abraham W. M. and Tanaka R. D. (1997) Lactoferrin, a potent tryptase inhibitor, abolishes latephase airway responses in allergic sheep. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 156: 375–381
107. Griffi ths C. E., Cumberbatch M., Tucker S. C., Dearman R. J., Andrew S., Headon D. R. et al. (2001) Exogenous topical lactoferrin inhibits allergen-induced Langerhans cell migration and cutaneous infl ammation in humans. Br. J. Dermatol. 144: 715–725
108. Zweiman B., Kucich U., Shalit M., Von Allmen C., Moskovitz A., Weinbaum G. et al. (1990) Release of lactoferrin and elastase in human allergic skin reactions. J. Immunol. 144: 3953–3960
109. Cumberbatch M., Bhushan M., Dearman R. J., Kimber I. and Griffi ths C. E. (2003) IL-1beta-induced Langerhans cell migration and TNF-alpha production in human skin: regulation by lactoferrin. Clin. Exp. Immunol. 132: 352–359
110. Kimber I., Cumberbatch M., Dearman R. J., Headon D. R., Bhushan M. and Griffi ths C. E. (2002) Lactoferrin: infl uences on Langerhans cells, epidermal cytokines, and cutaneous infl ammation. Biochem. Cell. Biol. 80: 103–107
111. He S., McEuen A. R., Blewett S. A., Li P., Buckley M. G., Leufkens P. et al. (2003) The inhibition of mast cell activation by neutrophil lactoferrin: uptake by mast cells and interaction with tryptase, chymase and cathepsin G. Biochem. Pharmacol. 65: 1007–1015
112. He S. H. and Xie H. (2004) Inhibition of tryptase release from human colon mast cells by protease inhibitors. World J. Gastroenterol. 10: 332–336
113. He S. H. and Xie H. (2004) Modulation of histamine release from human colon mast cells by protease inhibitors. World J. Gastroenterol. 10: 337–341
114. Caccavo D., Sebastiani G. D., Di Monaco C., Guido F., Galeazzi M., Ferri G. M. et al. (1999) Increased levels of lactoferrin in synovial fl uid but not in serum from patients with rheumatoid arthritis. Int. J. Clin. Lab. Res. 29: 30–35
115. Reghunathan R., Jayapal M., Hsu L. Y., Chng H. H., Tai D., Leung B. P. et al. (2005) Expression profi le of immune responsegenes in patients with Severe Acute Respiratory Syndrome. BMC Immunol. 6: 2 116. Greenberg D. E., Jiang Z. D., Steffen R., Verenker P. and Dupont H. L. (2002) Markers of infl ammation in bacterial diarrhea among travelers, with a focus on enteroaggregative Escherichia coli pathogenicity. J. Infect. Dis. 185: 944–949
117. Qadri F., Alam M. S., Nishibuchi M., Rahman T., Alam N. H., Chisti J. et al. (2003) Adaptive and infl ammatory immune responses in patients infected with strains of Vibrio parahaemolyticus. J. Infect. Dis. 187: 1085–1096
118. Kane S. V., Sandborn W. J., Rufo P. A., Zholudev A., Boone J., Lyerly D. et al. (2003) Fecal lactoferrin is a sensitive and specifi c marker in identifying intestinal infl ammation. Am. J. Gastroenterol. 98: 1309–1314
119. Larsen A., Hovdenak N., Karlsdottir A., Wentzel-Larsen T., Dahl O. and Fagerhol M. K. (2004) Faecal calprotectin and lactoferrin as markers of acute radiation proctitis: a pilot study of eight stool markers. Scand. J. Gastroenterol. 39: 1113–1118
120. Buderus S., Boone J., Lyerly D. and Lentze M. J. (2004) Fecal lactoferrin: a new parameter to monitor infl iximab therapy. Dig. Dis. Sci. 49: 1036–1039
121. Esteban M. A., Rodriguez A., Cuesta A. and Meseguer J. (2005) Effects of lactoferrin on non-specifi c immune responses of gilthead seabream (Sparus auratus L.). Fish Shellfi sh Immunol. 18: 109–124
122. Ishikado A., Imanaka H., Kotani M., Fujita A., Mitsuishi Y., Kanemitsu T. et al. (2004) Liposomal lactoferrin induced signify cant increase of the interferon-alpha (IFN-alpha) producibility in healthy volunteers. Biofactors 21: 69–72
123. Griffi ths E. A., Duffy L. C., Schanbacher F. L., Qiao H., Dryja D., Leavens A. et al. (2004) In vivo effects of bifi dobacteria and lactoferrin on gut endotoxin concentration and mucosal immunity in Balb/c mice. Dig. Dis. Sci. 49: 579–589
124. Kitagawa H., Yoshizawa Y., Yokoyama T., Takeuchi T., Talukder M. J., Shimizu H. et al. (2003) Persorption of bovine lactoferrin from the intestinal lumen into the systemic circulation via the portal vein and the mesenteric lymphatics in growing pigs. J. Vet. Med. Sci. 65: 567–572
125. Sfeir R. M., Dubarry M., Boyaka P. N., Rautureau M. and Tome D. (2004) The mode of oral bovine lactoferrin administration infl uences mucosal and systemic immune responses in mice. J. Nutr. 134: 403–409

на главную Вопросы и ответы

о нас
новости
продукция компании
болезни животных
научные работы
контакты
периодические
ветеринарные
издания


Vetdoctor.ru (ВСЯ ВЕТЕРИНАРИЯ)
  Сайт ведущего
производителя ветеринарных
препаратов
Разработка и дизайн
НПО Нарвак